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通过激发编码的镧系荧光团调色板进行实时体内多光谱近红外 II 成像

日期: 2026-06-24
浏览次数: 465

来源:X-MOL

多重荧光成像允许使用不同的发光探针同时可视化多个分析物,生成高含量数据集,加速从单细胞到组织尺度的发现。然而,由于可见光到近红外(NIR)I区(400-1000纳米)中光子散射和强组织自发荧光,实现体内实时多路复用成像仍是重大挑战。近红外II(1000-2000纳米)区域近年来因背景噪声被抑制,成为深层组织成像的优越光学区。

然而,在近红外II区域工作的探针仍然稀少,而可用的探针(如有机染料、量子点)由于其本质上的斯托克斯位移较小或发射带较宽,常常存在严重的光谱重叠。此外,传统的多路复用近红外二号成像主要依赖多发射方法,这些方法主要由于可变带通滤光片的限制,导致光子收集效率低下且信号随波长损失而显著提升。这些限制阻碍了活体受试者实时多路复用成像的发展。

最近,张及其同事基于镧系(III)-邻苯氰胺复合物构成的多功能光谱调色板,在活体小鼠中展示了高效的荧光复用[6]。这些配合物表现出Er的窄带发射3+在1530海里(4I15/2-4I13/2转变)被不同的酞氰酸敏化。值得注意的是,他们通过精确调谐邻苯二硫氰敏化剂的吸收曲线而非改变发射,从而创建了独特的光谱身份,这一过程通过在四个环的α、β或两个位置的系统取代基工程实现。因此,他们获得了九个独立荧光团,峰值吸收波长范围为673 nm至772 nm(对应EP673至EP772),同时保持窄带宽(全宽为20-48 nm半最大值)。



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